分光光度計是通過測量物質對特定波長光的吸收程度(吸光度)來進行定量或定性分析的儀器，其準確性受多種因素影響。以下從儀器性能、樣品特性、操作流程、環境條件及數據處理等角度，係統分析影響分光光度計結果的關鍵因素。

　　一、儀器性能因素

　　1. 光源穩定性

　　分光光度計的光源(如鎢絲燈、氘燈或LED)需提供穩定且連續的光譜。光源老化會導致光強衰減，尤其在紫外區或高靈敏度檢測中，可能引發基線漂移或噪聲增大。例如，氘燈使用壽命通常為1000-2000小時，超出後需更換。

　　2. 波長精度與帶寬

　　單色器的波長準確性直接影響測量選擇性。若波長偏差(如濾光片通帶半寬過大)，可能導致非目標成分的幹擾吸收。例如，核酸測定需260 nm精準波長，若偏移至280 nm會引入蛋白質吸收幹擾。

　　3. 檢測器靈敏度

　　光電管或光電二極管的響應線性範圍決定了低濃度樣品的檢測限。高增益模式下雖可提升靈敏度，但易引入暗電流噪聲，需根據樣品濃度合理選擇量程。

　　4. 雜散光

　　光學係統中的散射光會疊加在真實信號上，尤其在高濃度樣品或低吸光度區域(如<0.01 Abs)影響顯著。雙光束儀器通過參比通道可部分抵消雜散光，但仍需定期校準。

　　二、樣品特性因素

　　1. 濃度範圍與朗伯-比爾定律偏離

　　理想狀態下，吸光度(A)與濃度(c)呈線性關係(A=εlc)。但高濃度樣品因分子間相互作用(如締合、散射)或低濃度樣品因噪聲幹擾，均可能導致線性偏離。例如，蛋白質溶液在高濃度時因聚集產生濁度，吸光度不再隨濃度線性增加。

　　2. 化學幹擾與副反應

　　樣品中雜質或溶劑可能與目標物質競爭吸光。例如，RNA提取液中殘留的乙醇會在260 nm處產生背景吸收；金屬離子與顯色劑反應不全時，未反應的試劑會幹擾比色測定。

　　3. 物理狀態與均勻性

　　懸浮顆粒或乳濁液會引起光散射，導致吸光度虛高。例如，細菌懸液需超聲分散均勻；血脂樣本需離心去除沉澱。此外，溫度變化可能引起顯色反應平衡移動(如偶聯酶法測葡萄糖)，需恒溫控製。

　　三、操作流程因素

　　1. 比色皿的使用

　　- 材質與透光性：石英比色皿適用於紫外區，玻璃比色皿僅用於可見光；劃痕或油汙會導致光散射。

　　- 光學路徑匹配：參比液與樣品液需使用相同光徑的比色皿(如1 cm)，否則需通過空白校正消除誤差。

　　- 清潔度：殘留洗滌劑或指紋會引入背景吸收，需用超純水衝洗並擦幹。

　　2. 參比液的選擇

　　參比液應與樣品基質一致，以抵消溶劑、顯色劑或基質的背景吸收。例如，蛋白定量中參比液為緩衝液+顯色劑；而核酸測定中參比液為溶解樣品的同批次超純水。

　　3. 測量時間與穩定性

　　顯色反應需達到平衡(如考馬斯亮藍法需靜置5分鍾)，但長時間放置可能導致熒光猝滅或沉澱生成。例如，Fe²⁺與鄰二氮菲顯色後應在30分鍾內完成測定。

　　四、環境條件因素

　　1. 溫度波動

　　溫度影響顯色反應速率及平衡常數。例如，Coomassie Blue法測蛋白在低溫下顯色緩慢，高溫可能加速副反應。恒溫水浴或室溫控製(±2℃)是必要措施。

　　2. 濕度與粉塵

　　高濕度環境可能導致光學元件黴變，粉塵附著於比色皿或光源窗口會降低透光率。實驗室需配備除濕機，並定期清潔儀器。

　　3. 電磁幹擾

　　電源電壓波動(如超出±10%)會影響光源強度及檢測器增益。使用穩壓電源或UPS可減少此類誤差。

　　五、數據處理因素

　　1 基線校正

　　儀器開機後需預熱15-30分鍾，並通過參比液調零(A=0)。若 baseline 存在傾斜(如光源老化)，需采用多點校正或自動基線修正功能。

　　2. 吸光度範圍選擇

　　最佳測量範圍為0.2-0.8 Abs，過低則信噪比差，過高則偏離線性。可通過稀釋或濃縮樣品調整濃度，或改用高性能檢測器(如PMT)。

　　3. 標準曲線的線性驗證

　　係列標準溶液的R²值應≥0.999，否則需檢查試劑純度、顯色條件或儀器狀態。異常點(如高濃度拐點)應剔除並重新擬合曲線。

　　六、綜合控製策略

　　1. 儀器校準

　　定期進行波長校準(鈥玻璃濾光片)、吸光度校準(中性濾光片)及雜散光檢測(截止濾光片法)。

　　2. 標準化操作

　　嚴格遵循“固定順序”原則：參比液→低濃度→高濃度樣品，避免交叉汙染；同一實驗使用同一批號試劑與比色皿。

　　3. 方法開發驗證

　　通過加標回收率(95%-105%)、重複性(RSD<2%)及特異性測試，確認方法可靠性。